revista accb, artículos académicos, artículos. biología, ciencias, ACCB, biologicas
80-85

Cómo citar

Cardozo Pinzón, J. S., Marín Valencia, B. S., Godoy Castaño, J. S., & Suárez Román, R. S. (2017). Propagación in vitro Magnolia Hernandezii (Molinillo) a partir de hojas. REVISTA DE LA ASOCIACION COLOMBIANA DE CIENCIAS BIOLOGICAS, 1(29), Artículo Páginas 80–85. Recuperado a partir de https://revistaaccb.org/r/index.php/accb/article/view/142

Resumen

Se planteó una metodología para el cultivo In vitro de embriones cigóticos de Magnolia hernandezii, no obstante la escases de semillas durante el período 2016 – 2017-I, como consecuencia del aborto floral y de frutos ocasionado por los intensos períodos de sequía en el 2015 a causa del fenómeno del niño, obligaron el replanteamiento del proyecto y se optó, por la desinfección, establecimiento In vitro y producción de callos de este árbol endémico colombiano, actualmente en estado de amenaza. En tal sentido, se emplearon como explantes discos y fragmentos de hoja  y segmentos de peciolo (1 cm aproximadamente). Como medio de establecimiento se empleó MS modificado al 50%, suplementado con 1 mg/L de AIA y BAP. Los cultivos se mantuvieron en un cuarto de incubación con condiciones controladas de luz (16 horas luz, 2000 lux), humedad relativa (76-78%) y temperatura (25°C+/-2) durante 15 días, luego se sometieron a oscuridad total durante 15 días y posteriormente al fotoperiodo indicado (16/8 horas luz/oscuridad). Al cabo de dos meses se observó la formación de callos a partir de los explantes de peciolos. Los callos obtenidos fueron de consistencia friable, traslúcidos y pequeños, de 1 a 5 milímetros; algunos agrupados y otros sueltos.

80-85

Citas

Abdelnour, A. & Escalant, J. (1994). Conceptos básicos del cultivo de tejidos vegetales . Centro agronómico de investigación y enseñanza (CATIE) disponible en : http://orton.catie.ac.cr/repdoc/A6525E/A6525E.PDF

Calderón, S, E. (2012) Evaluación Preliminar del estado poblacional del molinillo (Talauma Hernandezii, Magnoliaceae) en el viejo caldas y norte del valle, Colombia. Bogotá; Instituto Alexander Von Humboldt.Disponible en: http://araneus.humboldt.org.co/conservacion/amenazadas/molinillo.html Consultado: Marzo 13 de 2017.

CARDER. (1997). Resolución Nº 177. Por la cual se regula el uso y aprovechamiento de los bosques situados en el territorio de jurisdicción de la CARDER. Risaralda, Pereira. Consultado: www.carder.gov.co/intradocuments/.../resolucion_carder_177_de_1997_16538

Cronquist, A. 1973. Botánica Básica. México, D.F. C.E.C.S.A. 587 p.

Gamboa, J. &. Abdelnour, A. 1999. Micropropagación de melina (Gmelina arborea ROXB). Agronomía costarricense, 23(1), 69-76. Disponible en: http://www.mag.go.cr/rev_agr/v23n01_069.pdf. Consultado Febrero de 2017.

Galaz G., M. del C. 2005. Obtención de células en suspensión a partir de callos de Olneya tesota. Tesis Ingeniería Biotecnológica. Instituto Tecnológico de Sonora. México. 102 Pp. Disponible en: http://biblioteca.itson.mx/dac_new/tesis/71_maria_galaz.pdf Consultado: Abril 12 de 2017.

García Lozano, D. L., Mesa López N., Ocampo Guerrero, M. L. Estandarización del protocolo de desinfección para la micropropagación de Aspidosperma polyneuron. Rev.Colomb.Biotecnol., Volumen 17, Número 2, p. 76-84, 2015. ISSN electrónico 1909-8758. ISSN impreso 0123-3475. Disponible en: http://revistas.unal.edu.co/index.php/biotecnologia/article/view/54277/54113 Consultado: Marzo 22 de 2017.

Hurtado, D. & Merino, M. (1988). Cultivo de tejidos vegetales. México: Editorial Trillas. Pag. 94-95

Karunaratne, S.; Gamage, C. & Kovoor, A. Leaf maturity, a critical factor in embryogenesis. J. Plant Physiol. 1991. Vol. 139. P. 27-31

Krikorian, A.D. Medios de cultivo: generalidades, composición y preparación. Pags. 41-77. En: Roca, W.M. & Mroginski, L.A. Ed. 1993. Cultivo de tejidos en la Agricultura. Centro Internacional de Agricultura Tropical CIAT. Cali.

Litz, R.E. & Jarret, R.L. Regeneración de plantas en el cultivo de tejidos: embriogénesis somática y organogénesis. Pags.144-172.En: Roca, W.M. & Mroginski, L.A. Ed. 1993. Cultivo de tejidos en la Agricultura. Centro Internacional de Agricultura Tropical CIAT. Cali.

Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.

Ortega, G.; Soria, N.; Taipe, M. & Reyes, C. 2013. Inducción al proceso de callogénesis In vitro a partir de cotiledones y ejes embriogénicos de semillas madura de Guarango (Cesalpinia spinosa) como coadyuvante para su preservación en el Distrito Metropolitano de Quito. Disponible en: https://repositorio.espe.edu.ec/bitstream/21000/6285/1/AC-BIO-ESPE-038474.pdf. Consultado. Abril 11 de 2017.

Pedroza Manrique, J. A.; Montes-Villegas, M. V. Micropropagación de Hypericum goyanesii, una especie en vía de extinción. Revista Científica, [S.l.], n. 10, p. 109-118, nov. 2007. ISSN 2344-8350. Disponible en: <http://revistas.udistrital.edu.co/ojs/index.php/revcie/article/view/300>. Fecha de acceso: 12 jun. 2017

Ramos Amaya, J.E. Avances de la micropropagación in vitro de plantas leñosas. Especialización en Biotecnología. Universidad Nacional Abierta y a Distancia UNAD. Noviembre 2012. Bogotá. 83 p.

Rodríguez, R.; Álvarez, C.; Centeno, M.; Berros, B.; & Rodríguez, A. 2005. Embriogénesis somática y estrategias para superar las limitaciones en plantas leñosas. En: Sánchez M. & Ríos D. (Eds.) Biotecnología vegetal en especies leñosas de interés forestal. Facultad de Ciencias Forestales. Universidad de Concepción. Chile. Pp. 63-67.

Perugorría L., M. 2005. Desarrollo de una técnica para la micropropagación de especies leñosas en biorreactores. Universidad de la república. Facultad de Ciencias. Maestría en Biotecnología. Instituto Nacional de Investigación Agropecuaria. Uruguay. https://www.colibri.udelar.edu.uy/bitstream/123456789/3974/1/uy24-15708.pdf Consultado: febrero 10 de 2017

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Métricas

Cargando métricas ...