Page 15 - Revista 2019
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Establecimiento in vitro y callogénesis de Rosa (rosa sp.). Villa & Arbeláez.

         rísticas proembriogénicas.                         de brotes y raíces adventicias.


         No obstante, se considera que el cultivo de callos puede  Una solución para evitar dicha contaminación es la apli-
         constituir un principio de variación genética que tiene la  cación de antibióticos para mejorar las fases siguientes.
         ventaja de permitir multiplicar rápidamente el material
         vegetal, García (10).                              Con relación a ala Multiplicación y el enraizamiento de

                                                            brotes de Rosa sp., Lomtatidze et. al, (11), en su trabajo
         En esta fase se evaluaron dos medios, el medio A con  con el níspero exploraron diferentes concentraciones de
         BAP 2 mg/L + 5 mg/L 2,4-D y el medio B con BAP 2   (BAP) y (ANA) y sus combinaciones. La citocianina a
         mg/L + 5 mg picloram, el medio A tuvo un promedio de  una baja concentración, provoca la morfogénesis api-
         callos formados de 0,7; mientras que el medio B tuvo  cal, que se expresa menos con la adición de altas con-
         un promedio de 0,4, lo que pone de manifi esto la mayor  centraciones de BAP al medio de cultivo. En cuanto al
         efectividad de la 2,4- D en comparación al picloram,  ANA, afi rman que altas concentraciones de la auxina,
         cuando se combinan con la misma dosis de una citoqui-  traen callogénesis más activa; aunque esta variable no
         nina BAP.                                          fue medida en esta fase, si pudo infl uir para darle cre-
                                                            cimiento  en  cuanto  a  las  alturas  promedio  del  medio
         Los reguladores de crecimiento primordialmente auxi-  A con 3mg/L en comparación a las del medio B con 1
         nas y citoquininas son los promotores más utilizados en  mg/L.
         la inducción de embriogenias somáticos en cultivo de
         tejidos vegetales.                                 Pérez (12), observó que con el aumento del BAP se sus-
                                                            citó un decrecimiento en la emisión de raíces, lo cual
         En  ambos  medios  se  mostró  una  aparición  de  callos  debió  estar  dado  por  un  desbalance  en  la  proporción
         friables, compactos y de color café, que se asimilaban  auxina-citoquinina,  favorable a la citoquinina que  in-

         a callos necrosados, algunos callos con esta apariencia  terviene en el crecimiento apical de los brotes, procedi-
         muestran brotes callogenicos después de un tiempo de  miento que se pudo dar también en este ensayo cuando
         sembrados. En esta investigación los callos obtenidos  el medio B presento menos raíces teniendo una mayor
         se mantienen en el laboratorio para posteriores estudios  concentración de la citoquinina que el medio A.
         en el área de embriogénesis.
                                                            Martínez (13), concluyó que la relación de BAP/ANA

         En Rosa sp, se ha investigado  el proceso de callos a  que sería efectiva para una organogénesis en embriones
         partir de explantes de pétalos en diferentes medios, re-  de C. elegans, se encuentra en un rango de concentra-
         sultando los más efectivos para la formación de callos:  ciones de 0,5 a 1,0 mg/L de BAP y no menos de 0,1
                                                                                   -1
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         el MS con ANA BAP y 2,4- D. (11).                  mg/L  de ANA en donde la proporción siempre debe
                                                            ser mayor de citoquinina/auxina; concentraciones mu-
         El  análisis  de  varianza  para  las  variables  presencia  cho menores a las utilizadas en este proceso, sin embar-
         de  raíz  (valor  p  =0,3398),  número  de  hojas  (valor  p  go, la diferencia de especies puede infl uir y es así como
         =0,4775) y formación de callos, (valor p = 0,1964), de-  varían los requerimientos para cada uno.
         mostró  que  no  existe  una  diferencia  estadísticamente
         signifi cativa, por lo tanto, cualquiera de los dos medios  Por otra parte, Moncada et. al, (14), afi rman que el BAP
         es óptimo en la fase de multiplicación y enraizamiento  y el 2,4-D juntos promueven el desarrollo de callos con
         de Rosa sp.                                        raíces y con potencial embriogénico; las concentracio-
                                                            nes bajas de estos 2 reguladores de crecimiento inducen
         Discusión                                          un mayor desarrollo de callos embriogénicos.


         La contaminación presentada en el establecimiento in  La respuesta embriogénica del callo depende del geno-
         vitro de yemas axilares de rosa se debe principalmente a  tipo de la planta. Algunos cultivares se pueden regene-
         bacterias, investigadores como Ramírez y Angarita (9),  rar simplemente en un medio específi co, mientras que
         argumentan que las bacterias endógenas son habituales  otros cultivares no responden en el mismo medio (Linz,
         en cultivos in vitro iniciados a partir de explantes to-  citado por Roca) (15).
         mados de plantas adultas crecidas en campo y afectan
         tanto al crecimiento de brotes como a la organogénesis  Según Data (16) y Esitken (17), en Rosa sp, se ha in-

                                                                                                          15
         Rev. Asoc. Col. Cienc.(Col.), 2019; 31: 10-17.
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