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PDF 120-132

Palabras clave

Biotecnología
bosque seco tropical
explantes
medios de cultivo
orquídea
osmorreguladores Biotechnology
tropical dry forest
explants
growing media
orchid
osmoregulators

Cómo citar

Hernández-Rosales, D. J. ., Ortega-Macareno, L. C. R., Beltrán-Herrera, J. D. ., & Martínez-Oviedo, L. M. . (2025). Conservación in vitro de Cyrtopodium schargellii mediante la técnica de crecimiento mínimo. REVISTA DE LA ASOCIACION COLOMBIANA DE CIENCIAS BIOLOGICAS, 1(37), Art 120–132. https://doi.org/10.47499/revistaaccb.v1i37.331

Resumen

Introducción: Cyrtopodium schargellii, conocida en ciertas zonas como “lluvia dorada”, es una orquídea nativa de América Central, distribuida en países como Venezuela y Colombia. Es posible encontrar esta orquídea en Colombia en el departamento de Córdoba y demás zonas aledañas. Objetivo: El objetivo de esta investigación fue establecer un protocolo viable y efectivo de conservación in vitro de la orquídea C. schargellii; Materiales y métodos: para ello, se hizo uso de plántulas de dicha especie previamente germinadas in vitro, para posteriormente tomar explantes y sembrarlos en medios de cultivo suplementados con sales (MS) al 100% y dos osmorreguladores (manitol y sorbitol) en cuatro tratamientos para cada sustancia: T1 (0,5%), T2 (1%), T3 (1,5%) y T4 (2%). Además, se preparó un control (T0, sin osmorreguladores y con sales MS al 100%). Resultados: En el caso del manitol, se observa formación de brotes y raíces, acompañado de clorosis y muerte de algunos explantes, mientras que en el caso del sorbitol, se observa poca formación de brotes y raíces, y supervivencia de todos los explantes. Conclusión: En conclusión, el protocolo de conservación in vitro dado por sorbitol al 0,5% fue el mejor tratamiento para la conservación de esta orquídea.

https://doi.org/10.47499/revistaaccb.v1i37.331

Citas

Hernández-Rosales, D. & Ortega-Macareno, L. (2025). Muestreo y recolección de Cyrtopodium schargellii y Trichocentrum nudum, dos orquídeas epífitas presentes en el municipio de Sampués. Universidad de Sucre. Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/rix1ig accessed via GBIF.org on 2025-08-25. https://gbif.org/occurrence/5219767302

Romero, G., Aymard, G. y Carnevali, G. (2005). Cyrtopodium schargellii (Cyrtopodiinae, Orchidaceae), a new species from northern south america. Harv. Pap. Bot. 10:123-127. DOI:10.3100/1043-4534(2005)10[123:CSCOAN]2.0.CO;2.

https://doi.org/10.3100/1043-4534(2005)10[123:CSCOAN]2.0.CO;2

Díaz, L., Carmona, O. y Beltrán, J. (2015). Optimización de la conservación in vitro de germoplasma de Dioscorea spp. por crecimiento mínimo. Rev. Colomb. Biotecnol. XVII (1): 32-39. DOI: 10.15446/rev.colomb.biote.v17n1.50842.

https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v17n1.50842

Montalvo, M., Iglesias, L., Mijangos, J., Nahuat, S., Barahona, F., Canto, A. y Santana, N. (2007). In vitro germoplasm conservation of Habanero Pepper (Capsicum chinense Jacq.). Hortscie. 42(5):1247-1252. DOI: https://doi.org/10.21273/HORTSCI.42.5.1247.

https://doi.org/10.21273/HORTSCI.42.5.1247

Suárez, I. (2020). Cultivo de tejidos vegetales. Fondo Editorial Universidad de Córdoba, Cra. 6 No. 77 -305 Montería Colombia. ISBN 978-958-5104-09-9. https://core.ac.uk/download/pdf/288339333.pdf

Pineda, A., Hernández, A. y Díaz, H. (2021). Multiplicación y reducción del crecimiento in vitro de papa chaucha (Solanum tuberosum L. grupo Phureja). Manglar 18(2): 123-128, 2021. DOI: http://dx.doi.org/10.17268/manglar.2021.016.

https://doi.org/10.17268/manglar.2021.016

García, L., de Feria, M. y Acosta, K. (2007). Aspectos básicos de la conservación in vitro de germoplasma vegetal. Biotecn. Veg., 7(2), 67-79. https://biblat.unam.mx/hevila/Biotecnologiavegetal/2007/vol7/no2/1.pdf

Ruíz, A. (2020). Germinación asimbiótica in vitro de Sobralia macrantha Lindl., una orquídea terrestre nativa de México. UNAM. https://ru.dgb.unam.mx/bitstream/20.500.14330/TES01000804010/3/0804010.pdf

López, G., y Herrera, G. (2022). Asymbiotic germination, in vitro conservation and regeneration of Catasetum integerrimum. Polibot., (53), 135-149. https://doi.org/10.18387/polibotanica.53.9.

https://doi.org/10.18387/polibotanica.53.9

Rayas, A., López, J., Medero, V., Basail, M., Santos, A. y Gutiérrez, Y. (2019). Conservación in vitro de cultivares de Ipomoea batatas (L.) Lam por crecimiento mínimo con el uso de manitol. Biotecn. Veg., 19(1), 43-51. http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S2074-86472019000100043&script=sci_arttext

Montiel, P., Castillo, C., Gómez, L., Valle, M. y Jasso, J. (2015). Conservación in vitro por crecimiento mínimo de Swietenia macrophylla King, y Tectona grandis L. Agroproduct: 9(2):20-25. https://revista-agroproductividad.org/index.php/agroproductividad/article/view/715/584

Cárdenas, M. y Villegas, A. (2002). Potencial osmótico del medio de cultivo con diferentes componentes para la propagación in vitro. Rev. Fitotec. Mex. 25(2), 213-217. https://revistafitotecniamexicana.org/documentos/25-2/13a.pdf

https://doi.org/10.35196/rfm.2002.2.213

Bello, J., García, G. y Iglesias, L. (2015). Conservación de vainilla (Vanilla planifolia Jacks.) bajo condiciones de lento crecimiento in vitro. Rev. Fitotec. Mex 2015, 38 (2):165-171. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S0187-73802015000200006&script=sci_arttext

https://doi.org/10.35196/rfm.2015.2.165

López, G. (2013). Un protoloco efectivo de crecimiento in vitro para la conservación de la orquídea Epidendrum chlorocorymbos SCHLTR. Trop. Subtrop. Agroecosyt, 16 (2013): 61 - 68. DOI:10.56369/tsaes.1360

https://doi.org/10.56369/tsaes.1360

Skalova, I., Viehmannova, I. y Vitamvas, J. (2012). In vitro conservation of Smallanthus sonchifolius under slow-growth conditions. Agric. Trop. Et Subtrop., 45/3, 147-150, 2012. DOI: 10.2478/v10295-012-0024-5

https://doi.org/10.2478/v10295-012-0024-5

Srivastava, M., Purshottam, D., Srivastava, A. y Misra, P. (2013). In vitro conservation of Glycyrrhiza glabra by slow growth culture. Intern. J. Biotechn. Res. 3 (1): 49-58.

González, E. (2007). Establecimiento de las condiciones de crecimiento mínimo para la conservación in vitro de germoplasma de chile habanero (Capsicum chínense Jacq.). Tesis. Facultad de Química. Universidad Autónoma de Yucatán.

da Costa, M., da Silva, A., da Silva, C. Duarte, F. y da Silva, J. (2011). Efeito da sacarose e do sorbitol na conservação in vitro de segmentos nodais de mangabeira. Rev. Ciên. Agron., 42 (3) 735-741,

https://doi.org/10.1590/S1806-66902011000300020

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