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Identifi cación morfológica de agentes patógenos asociados a Tabebuia rosea (Bignoniaceae). Castaño & Lora

Referencias

1. Pinzón F. P.O., (1996). Diagnóstico de Plagas y Enfermedades Forestales Recomendaciones para la
Toma de Muestras. 1-2 p.
2. Marciales C., M., S.; Bermúdez R., A., C. (2006). Bacterias endófi tas de Cordia alliodora oken y Ta-
bebuia rosea Bertold D.C: potencial como promotoras del crecimiento vegetal en la propagación de
hospedero. Bogotá. 1-2 p.
3. Vergel D.M.; Leguizamon J.E; Cortina G.H.; Torres T. E. (2000). Reconocimiento y frecuencia de
Meloidogyne spp. en una localidad de la zona cafetera central de Colombia. Cenicafe; 51(14): 285-295,
4. Ospin, C.M.; Hernández R.J.; Yandar S.E.; Aristizabal F.A.; Rincón E.A.; Gil Z.N.; García J. c.; Pater-
nina N.M. (2008). El Guayacán Rosado o roble /Tabebuia rosea/ (Bertol) DC. Guías silvicultura para
el manejo de especies forestales con miras a la producción de madera en la zona andina colombiana.
Cenicafe. 31-41 p.
5. Castro L.Y., Forero L.M.,. (2010) Identifi cación de hongos fi topatógenos asociados al roble (Quercus
humboldtii BONPL.), en los municipios de Encino (Santander), Arcabuco, y Tipacoque (Boyacá). Re-
vista Colombia Forestal Vol. 13 (2): 347-356
6. Peraza-Padilla, W.; Rosales Flores, J.; Esquivel-Hernández, A.; Hilje Rodríguez, I.; Molina Bravo,
R.; Castillo Castillo, P. (2013). Identifi cación morfológica, morfométrica y molecular de Meloidogyne
incognita en higuera (fi cus carica l.) en costa rica. Agronomía Mesoamericana; 24(2):337-346 https://
doi.org/10.15517/am.v24i2.12533
7. Kofoid C. A; White, W. A. (1919). A new nematode infection of man. JAMA. 72:567-569.
8. Chitwood, B. (1949). Root-know nematodes, part I. A reviews of the genus Meloidogyne goeli, 1887.
Proc Helminthol Soc Wash; 16(2):.90-114
9. Ordeñana K. M. (2002). Mecanismos de defensa en las interacciones. Manejo Integrado de Revista
Manejo Integrado de Plagas. 63, 22-32
10. Stakman E. y Hart H. (1933). The nature of resistance of cereals to rust. 3rd Int Congr Comp Path
Rept 12: 253-266.
11. Goeldi, E. (1892). Relatorio sobre a molestia do cafeeiro na provincia de Rio de Janeiro. Arquivos doo
Museu Nacional, 8.
12. Perry R.; Moens M. (2009). Root-Knot Nematodes. First edition. CABI, Pp 483.
13. Kennard D., Guold, F., Putz, T., Fredericksen, T., y Morales, F. (2002). Effect of disturbance intensity
on regeneration mechanisms in a tropical dry forest. Forest Ecol Manag; 162:197–208
14. Erazo S.; y Rivillas Osorio C. (2006). Interacciones de las Micorrizas Arbusculares (MA) Con Me-
loidogyne incognita y Meloidogyne javanica en raices de Tabebuia rosea. Rev cienc agric. 23(1 y 2),
26-53..
15. Castillo Marroquin J. H. (2014). Identifi cación de especies de Meloidogyne spp. Presentes en el mu-
nicipio de Patzicía, Chimaltenango . (Tesis de grado), 22. http://biblio3.url.edu.gt/Tesario/2014/06/14/
Castillo-Jose.pd
16. Carneiro R.; Randig O.; Almeidar M.; Gómez, A. (2004). Additional information on Meloidogyne
ethiopica Whitehead, 1968 (Tylenchida: Meloidogynidae) a root-knot nematodo de parasitising kiwi
fruit and grape-vine from Brazil and Chile. (Tesis de grado) Nematology, 109-128
17. Hirschman, H. (1983). Scanning electron microscopy as a toll in nematode taxonomy. In Concepts
nematode systematics. Academic Press, New York, 98-111.
18. Escobar Moreno C. A. (2006). Determinación de Especies y Patotipos de Meloidogyne, En Kiwi (Ac-
tinidia deliciosa) y Tomate (Lycopersicum esculentum), Mediante el Test de Hospederos Diferentes.
(Tesis de grado), Santiago-Chile, http://repositorio.uchile.cl/bitstream/handle/2250/101835/escobar_c.
pdf?sequence=4&isAllowed=
19. Santacruz Delgado C. X. (2013). Caracterización morfológica, patogénica y molecular de especies
de Colletotrichum spp. Causantes de la Antracnosis del Fruto de Aji y Pimenton Capsicum spp. En el
Valle del Cauca. (Tesis de Maestría), 22-23. https://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/21741.
20. Kim K. H., Yoon J. B., Park H. G., Park E. W., Kim Y. H. (2004). Structural modifi cations and progra-
mmed cell death of chili pepper fruit related to resistance responses to Colletotrichum gloeosporioides
infection. Phytopathology, 94(12), 1295-1304

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Rev. Asoc. Col. Cienc.(Col.), 2020; 32: 154-170